不需要,每使用3-5次后再生层析柱即可。
不需要,每使用3-5次后再生层析柱即可。
不行,PBS的浓度较低,会导致一些非特异蛋白的结合。
凯发一触即发建议PMSF的终浓度为1 mM。
问题 |
可能原因 |
解决方案 |
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蛋白不结合 |
层析柱在缓冲液中未充分平衡。 |
重复或者延长平衡步骤。 |
蛋白质沉淀在层析柱滤膜上。 |
清洁层析柱,更换或清洁滤膜。 |
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纯化缓冲液中含有螯合剂,如EDTA或EGTA。 |
准备新的不含螯合剂的缓冲液。 |
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组氨酸标签埋藏在蛋白质内部,在天然条件下无法结合。 |
使用其他融合标签,或者尝试将组氨酸标签融合到蛋白质的另一端。 |
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产量低 |
纯化缓冲液和洗杂缓冲液中咪唑的浓度较高,导致样本与填料的结合亲和力较弱。 |
优化咪唑浓度,使其适用于您的蛋白质纯化。 |
蛋白酶降解。 |
添加蛋白酶抑制剂。 |
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蛋白仍结合在填料的配基上。 |
尝试更高浓度的咪唑洗脱。 |
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高流速可能会减少蛋白的结合时间,使蛋白在流穿过程中丢失。 |
流速对蛋白质结合至关重要。使用较低的流速,或尝试批量孵育。 |
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层析柱过载会降低蛋白得率。 |
推荐蛋白上样量保持在层析柱体积的50–75%。 |
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纯度低 |
宿主蛋白中含有多个串联组氨酸残基,它们可以与镍柱产生弱结合并和目的蛋白一起洗脱下来。 |
在裂解液和Wash Buffer中加入低浓度咪唑以洗脱非特异性结合蛋白。 |
宿主伴侣蛋白(HCP)是一种常见的污染物。 |
MgCl2和ATP可用于去除HCP。 |
问题 |
可能原因 |
解决方案 |
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纯化的GST融合蛋白的产量低或检测不到 |
融合蛋白形成包涵体。 |
在较低温度(20-30°C)下培养细菌,或将诱导蛋白质的IPTG终浓度降低至0.1mM,或减少诱导时间。 |
在纯化之前,适当溶解包涵体。 |
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融合蛋白不能有效地与谷胱甘肽树脂结合。 |
进行批量孵育, 将含有GST融合蛋白溶液与谷胱甘肽树脂孵育2小时或更长时间(或者过夜),然后将孵育混合物上样到层析柱上。 |
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融合蛋白不含有活性的GST。 |
使用温和的超声处理条件或其他裂解方法,例如溶菌酶,使GST不变性。 |
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融合蛋白被蛋白酶降解。 |
在裂解液和Wash Buffer中加入适当的蛋白酶抑制剂,如PMSF。 |
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融合蛋白不能有效地洗脱出来。 |
增加洗脱时间或将洗脱缓冲液中谷胱甘肽的浓度增加到15 mM或更高。 |
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在不增加谷胱甘肽浓度的情况下将洗脱缓冲液的pH值调节至8.0-9.0。 |
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向洗脱缓冲液中加入Triton X-100(终浓度0.1%)或n-Octylglucoside(终浓度2%)或NaCl(终浓度0.1-0.2M)。 |
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在洗脱蛋白中观察到杂带 |
融合蛋白被蛋白酶降解。 |
在裂解液和Wash Buffer中加入适当的蛋白酶抑制剂(或抑制剂混合物),如PMSF。 |
一些宿主蛋白比如伴侣蛋白可能与融合蛋白相互作用。 |
在Wash Buffer中加入DTT(终浓度5mM)。纯化前,将重组蛋白溶液用伴侣蛋白缓冲液(2 mM ATP、10 mM MgSO4、50 mM Tris-HCl)37°C孵育10分钟。 |
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过度超声会导致一些蛋白质与融合蛋白结合。 |
使用较温和的超声条件或其他裂解方法。 |
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一些蛋白质会非特异性地与融合蛋白或珠子结合。 |
优化洗脱条件。可加入1% Triton X-100、1% Tween-20、0.03% SDS或0.1% NP-40等去垢剂减少非特异性结合。也可以优化洗脱Buffer中的盐浓度以减少非特异性结合。 |
问题 |
可能原因 |
解决方案 |
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层析柱的流速非常低(<0.5 mL/分钟) |
缓冲液的微小气泡或来自样品的颗粒会阻塞凝胶孔。 |
将缓冲液和样品排气,纯化过程避免层析柱干燥。 |
已上大量样品,但未检测到特异性目标抗体 |
目标抗体的浓度非常低。 |
使用与树脂偶联的特异性抗原纯化抗体(High-Affinity Iodoacetyl Resin,货号L00403)。 |
抗体降解 |
该抗体可能对低pH洗脱缓冲液敏感。 |
洗脱后立即用中和缓冲液中和洗脱的馏分。 |
在任何洗脱成分中均未检测到抗体 |
该IgG亚类可能不与填料结合。 |
尝试使用其他亲和色谱介质来纯化抗体,例如Protein G Resin或Protein L Resin。 |
问题 |
可能原因 |
解决方案 |
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高背景 |
IP过程中洗涤不完全。 |
增加洗涤次数并延长洗涤时间。凯发一触即发纯化磁珠可有效避免高背景产生。 |
IP过程中的蛋白质降解。 |
裂解样品时加入新鲜制备的蛋白酶抑制剂。 |
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非特异性结合 |
琼脂糖珠的结构会吸收非特异性蛋白质。 |
在免疫沉淀前将琼脂糖珠与裂解物进行预孵育。使用凯发一触即发的MagBeads可消除这一步。 |
未检测到目标蛋白 |
样品中目标蛋白的表达水平较低。 |
增加裂解液的上样量。 |
R250
蓝色:染色液,绿色:脱色液,白色:废液
用37℃水浴融化,充分摇匀后使用;当环境温度较低时,建议打开空调保持室温稳定
推荐程序:eStain LG:染色3min,脱色2min、3min、3min;eStain L1:染色3.5min,脱色1.5min、3min、2min;不同1.5mm凝胶的配胶体系、浓度不同也可能导致结果不同,可根据实验结果优化染脱色程序
可以延长染色时间,如染色5min,脱色2min+3min;或者减少1个脱色循环,如:染色4.5min,脱色3min,但背景可能也会相对变深,需要根据实验表现优化
不影响
若染色夹网面无损坏,仅夹子中间连接处断裂,一般不影响使用效果;如果损坏较严重,无法使用,可以购买凝胶固定夹配件自行组装(Cat. No. L00767)
染色夹维护:
eStain仪器维护:
当通道染色100片凝胶时,需要用清洗液对通道以及管路进行清洗,操作步骤见eStain清洗试剂盒说明书(Cat.No. L00668)
按任意键解除,仪器可以继续工作不影响使用;该提示可能是仪器PUMP、valve(1)、valve(2)、valve (3)、channel A、channel B部分使用寿命已经达到预定最大值,建议及时联系工程人员确认是否需要维护,以免造成不必要的损失
开机检测到在上次关闭仪器前有未完成的程序,安全起见,通道进行强制排液,因此无需任何操作,需等待仪器检测运行结束,仪器将自动跳转主界面。
传统湿法转印耗时长、操作繁琐;eBlot™ L1快速湿转仪基于湿转的原理,集合了传统湿转稳定、均匀和半干转快速、高效的优势,同时避免了传统湿转耗时费力和半干转不均匀稳定性差的缺点,仪器自带三个预设程序,能够在9-17分钟内快速高效地实现蛋白从聚丙烯酰胺凝胶转移到PVDF膜或NC膜上的过程。
蓝色buffer1:转膜液,绿色buffer2:冷却液(推荐使用1%转膜液或纯水),白色:废液。
仪器中自带三个预设程序,Short:2×5min,Standard:3×5min,Long:4×5min,Method 4清洗程序,Method 1-3出厂未设定,客户可根据自身实验情况设置
400W
海绵使用后会变薄,可能导致三明治结构不紧条带转飘、仪器报错等情况
海绵上有小气孔是正常的,不会影响实验结果;如果出现气孔完全穿透海绵的情况,请联系售后:cpbu.techsupport@genscript.com
转膜过程中转膜夹竖直放置,转膜结束后,海绵上的液体受重力作用向下流淌,造成上半部分仍是干燥的错觉,但实际上在转膜过程中是充分浸润的
按任意键解除,仪器可以继续工作不影响使用;该提示可能是仪器PUMP、valve(1)、valve(2)、 valve(3)、channel A、channel B部分使用寿命已经达到预定最大值,建议及时联系工程人员确认是否需要维护,以免造成不必要的损失
开机检测到在上次关闭仪器前有未完成的程序,安全起见,通道进行强制排液,因此无需任何操作,需等待仪器检测运行结束,仪器将自动跳转主界面
定时清洁维护仪器可以预防仪器报错、吐泡等问题,延长仪器使用寿命;
转膜夹维护:每次转膜完成后,用流水冲洗转膜夹四面晾干保存; 建议1个月除锈一次,若夹子生锈严重可视情况增加除锈次数,将柠檬酸(192g柠檬酸或210g一水柠檬酸)溶解到 1L 纯水中,配制成 1M 除锈剂,将夹子浸泡其中8 h或者过夜,用刷子除锈后,用水冲洗夹子晾干;
eBlot™ L1仪器维护:通道完成30片凝胶转膜后,需要对通道和管路进行清洗,每次约5min;
程序名称 | 程序内容 | |
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Method 4 | Buffer 1 | 4 times |
Cycle 1 | 0min | |
Cycle 2 | 0min | |
Cycle 3 | 0min | |
Cycle 4 | 0min | |
Buffer 2 | 0 times | |
Cooling cycles | 0 times | |
First buffer | Buffer1 |
必要时可重复步骤2-7,进行1-3次清洗。
长时间不使用仪器:如果长时间不使用仪器,请在连续运行2次管路排空操作(同时长按UP+SETTING)后断开电源,并将转膜液瓶盖换为密封式瓶盖,防止液体挥发。